ЛАБОРАТОРНАЯ ДИАГНОСТИКА ГОНОРЕИ.  

ЛАБОРАТОРНАЯ ДИАГНОСТИКА ГОНОРЕИ.

Предыдущая10111213141516171819202122232425Следующая

Диагноз гонореи основывается на данных бак­териоло­гического и бак те ри ос конического исследования и иденти­фикации возбудителя. Применяются также иммунологиче­ские методы для выявления антител (реакция Борде - Жангу) и антигенов (иммунофлюоресцентный и иммунохимический методы), а также поста­новка кожно-аллергическях проб с гонококко­вым аллергеном. Материалом для исследова­ния на гонорею обычно служит отделяемое из уретры, парауретральных протоков, большой железы преддверия, канала шейки матки, вла­галища, секрет предста­тельной железы, се­менных пузырьков, желез и лакун уретры, про­мывные воды прямой кишки, соскобы из уретры и прямой кишки, а также отделяемое глаз при гонобленорее и синовиальная жид­кость при поражении суставов. Забор мате­риала производит врач.

Отделяемое уретры у мужчин (предварительно отвер­стие очищают ватным тампоном, смочен­ным физиологическим раствором) захватывают краем предметного стекла, желобоватым зон­дом, ложечкой Фолькмана или берут петлей из глубины. У женщин материал для исследова­ния из уретры, бартолиновых желез и пара­уретральных ходов после обтирания их ватным тампоном берут тупой ло­жечкой. Чтобы взять материал из шейки матки, во влагали­ще вво­дят зеркало Куско, протирают ватным тампо­ном и отделяемое берут влагалищным пинце­том или браншей корцанга. Из прямой кишки материал берут тупой ло­жечкой или с помо­щью промывных вод, в которых вылав­ливают подозрительные комочки, нити и готовят из них мазки. Из материала, взятого из каждого пора­женного органа и урогенитального тракта, го­товят мазки на двух стеклах. Мазки должны быть равномерно размазанными, нетолсты­ми. Гонококки в тонких слоях окрашиваются гра­мотрица-тельно или переобесцвечиваются, в толстых — грамположительно. Высушенные на воздухе мазки фиксируют на пламени го­релки и окрашивают (один мазок—1%-ным раствором метиленового синего, второй — по Граму). При окраске по Граму лучше пользо­ваться водным раствором кристаллического фиолетового и 1%-ным водным раство­ром нейтрального красного. Мазок, окрашенный метиленовым синим, используется только для предварительного ориентировочного про­смотра. Окончательное заключение по резуль­татам микроскопии делается только на основа­нии окраски препарата по Граму. Если не учесть это замечание, то можно допустить ошибку, так как другая флора, помимо гоно­кокка, может располагаться внутриклеточно и иметь внешнее сходство с гонококком. Окраска метиленовым синим. На мазки, высушенные на воздухе и фиксированные над пламенем спир­товки или метиловым спиртом, на 15—20 с на­носится 1 %-ный водный раствор метиленового синего, который затем осторожно смывается водой. После высушивания мазки микроскопи-руются. Цитоплазма форменных элементов ок­рашивается в бледно-голубой цвет, ядра - в синий, гонококки - в ин­тенсивно-синий. Анало­гично окрашиваются и другие кок­ки. Если они находятся внутри клеток, то напоминают гоно­кокки. Окраска по Граму. Реактивы: 1 %-ный водный раствор кристаллического фиолетового (краску растворяют в горя­чей дистиллирован­ной воде, раствор охлаждают и филь­труют че­рез двойной бумажный фильтр); раствор Лю­голя (1 г кристаллического йода, 2 г калия йодида, 300 мл дистиллированной воды); 96%-ный эти­ловый спирт; 1%-ный водный раствор ней­трального красного.На высушенный и фикси­рованный над пламенем спир­товки мазок кла­дут фильтровальную бумагу по размеру пред­метного стекла или несколько меньше, нали­вают на 1—2 мин раствор кристаллического фиолетового или же на мазок кладут фильтро­вальную бумагу, пропитанную 1%-ным водным раствором кристаллического фиолетового. За­тем мазок смывают водой и заливают раство­ром Люголя на 30—60 с. Потом раствор Лю­голя сливают, и мазок погружают в ванночку с 96%-ным спиртом для обесцвечи­вания, кото­рое производят под визуальным контролем, по­гружая и вынимая мазок из спирта до тех пор, пока с него перестанут стекать струйки краски. Препарат бы­стро промывают водой, наливают на 2 мин раствор ней­трального красного, после чего мазок промывают водой и высушивают на воздухе. Препарат микроскопируют под иммер­сионной системой при плоском зеркале и от­крытой диафрагме. Гонококки окрашиваются в ярко-розовый цвет, протоплазма лейкоци­тов — в слаборозовый цвет. Ядра лейкоцитов и эпи­тели­альных клеток, поскольку они удерживают частично кристаллвиолет, окрашиваются в слабосиний цвет. В пере­обесцвеченном мазке ядра лейкоцитов и эпителиальных клеток почти не имеют фиолетовой окраски. В недообесцвеченном мазке гонококки окрашиваются в фиолетовый цвет и их можно принять за гра­ммоложительные кокки, В случае неправильной окраски мазка по Граму берут препарат, окра­шенный метиленовым синим, предваритель­но снимая с него иммерсионное масло спиртом или ксило­лом, и окрашивают по Граму. Посылая в лабораторию материал для исследования, необходимо приложить к нему направление, в котором следует указать, от­куда взят материал, фамилию, инициа­лы больного, номер истории болезни и предпола­гаемый диагноз. В ответах из лаборатории нужно отмечать коли­чество форменных эле­ментов, эпителиальных клеток в мазке, присут­ствие или отсутствие других микроорга­низмов (и их отношение к окраске по Граму), вагиналь­ных трихомонад, дрожжевых клеток. Если при бактериоскопии не выявлены гонококки, прибе­гают к методу посева пато­логического мате­риала из очагов поражения на искусствен­ные питательные среды. Им пользуются в подозри­тельных на гонорею случаях, при торпидной, хрониче­ской гонорее, у заведомых источников заболе­вания гонореей, в случае воспалительных за­болеваний урогенитального тракта у женщин, для подтверждения диагноза при установлении излеченности у детей, при исследовании мате­риала из полости рта, при подозрении на гоно­рею глаз. Наилучшей средой для получения культуры гонококка является мясопептонный агар с добавлением асцитной или гидроцель­ной жидкости. В. Н. Беднова и М. Я. Яцуха предложили безасцитные среды. При посеве загрязненного посторонней микробной фло­рой (из прямой кишки) материала в среду добав­ляют полимиксин М (12,4 ЕД/мл) и ристоми­цина сульфат (6,2 ЕД/мл). Оба антибиотика подавляют рост грамположительных и грамот­рицательных микробов, не влияя на рост гоно­кокков. Наилучший результат дает непосредст­венный посев материала на питательные среды. Если невозможно произвести бактерио­логические исследования на месте, пользуются транспортными средами. Гонококк на искусст­венных питательных средах дает рост обычно через 24 ч в виде мелких росовидных колоний. Если на следую­щий день рост гонококков не обнаружен, за посевами наблюдают 6—1 сут. Распознавать гонококковые колонии помогает оксидная реакция. На выросшие подозритель­ные колонии наносятся одна-две капли 1 %-ного раствора пара-фенилендиамина или 0,5%-ного раствора тетраметилпара-фенилен­диамина гидрохлорида. Гонококковые колонии при этом окрашиваются в пурпурно-коричне­вый (до черно­го) цвет. При микроскопии мазков, приготовленных из суточной культуры, гоно­кокки имеют вид кокков или диплококков оди­наковой величины; приготовленные из трехсу­точной культуры гонококки полиморфные, от­дельные экземпляры окрашиваются очень бледно, количество гонококков с со­хранив­шейся морфологией невелико. Дальнейшую иденти­фикацию подозрительных на гонококк колоний производят на желточной среде фер­менции. Использование ее позволя­ет, как пра­вило, выделить гонококки в монокультуре. Для отличия гонококков от сходных с ними микро­бов можно ограничиться исследованием фер­ментации глюко­зы, мальтозы, левулезы. Гоно­кокки ферментируют только глюкозу. Для выяв­ления гонококков в отделяемом применяют прямой метод иммунофлюоресценции. Для этого приготовленные мазки выдерживают в меченной изотиоциона-том антигонококковой сыворотке в течение 1 ч при 35°С во влажной камере, промывают фосфатным буфером и ис­сле­дуют в люминесцентном микроскопе. Метод пригоден для дифференцирования гонококков в культурах и менее ин­формативен при иссле­довании мазков, приготовленных из отделяе­мого очагов поражения.



В последние годы в диагностике гонореи ис­пользуют иммуноферментный анализ, разра­ботанный фирмой «АВ ВОТТ» в США. Тест об­ладает большой информативностью и сокра­щает сроки диагностики. В качестве отбороч­ного теста при обследовании на гонорею при­меняют постановку внутрикожной пробы с ал­лергеном гонококка, содержащим иммунологи­чески актив­ный белок, позволяющий выявить состояние сенсибилиза­ции к возбудителю. Для выявления специфической сенси­билизации к гонококку аллерген в количестве 0,1 мл вводят в область средней трети внутренней поверхно­сти предплечья строго внутрикожно. Оценку реакции произво­дят через 24 ч после введения препарата (реакция ги­перчувствительности замедленного типа). В зависимости от размера местной реакции ее оценивают на + (диаметр 6—10 мм), ++ (11—20 мм), + + + (свыше 20 мм). Результат считается положительным при на­личии гипере­мии с инфильтрацией диаметром свыше 5 мм. Лица с поло­жительными резуль­татами внутрикожной пробы подлежат углуб­ленному клинико-лабораторному обследова­нию на гонорею. Противопоказания к поста­новке пробы: деком-пенсированное заболева­ние печени, почек, сердечно-сосу­дистой сис­темы, крови, туберкулез, ревматизм в стадии обострения, беременность, новообразования, аллергические заболевания и предшествую­щая гормонотерапия, острые интеркуррентные заболевания.


8246147562391680.html
8246207798778514.html
    PR.RU™